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            利用徠卡THUNDER成像系統探索微生物腸道免疫機制

            閱讀:1286      發布時間:2020-8-24
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            由SARS-CoV-2冠狀病毒引起的疫情影響了世界的方方面面。免疫和治療方法等抗病毒方向的研究在2020年具有高優先級,顯微鏡在這類研究中起著舉足輕重的作用。了解受體結合、基因組釋放、復制、組裝和病毒出芽的基本原理及免疫應答,可以使用不同的方法和顯微鏡。鑒于顯微鏡在感染生物學中的重要作用,我們舉例闡述不同的顯微技術及其在這些研究領域中的應用。

             

            研究背景

            人類出生后胃腸道立刻被復雜的微生物群落定植(1000余種,且數量>100萬億),而這些腸道微生物群落影響宿主生理的多個方面,包括代謝、免疫反應、行為和晝夜節律等等。先前的研究認為腸道微生物群落主要是共生菌,共生菌可控制病原菌數量,而黏膜屏障免疫對于維持共生菌群和抵抗侵入性細菌感染至關重要。

            微生物-腸-腦軸是將大腦和腸道功能整合的雙向信息交流系統,并涉及神經、免疫和內分泌機制。除了神經內分泌系統和神經免疫系統之外,該軸還包括了中樞神經系統(CNS)、自主神經系統(ANS)的交感神經和副交感神經分支以及腸道神經系統(ENS)。從腸道到CNS的傳入纖維(如大腦、扣帶回、小腦扁桃體和扁桃體皮質)以及腸道平滑肌的效應纖維是沿著微生物-腸-腦軸進行雙向信息交流的主要途徑。

            微生物--腦軸

             

            腸道神經系統(ENS)遍布腸道組織的每個角落,將收集到的信息迅速地傳遞到自體或非自體類型的細胞,織就一個龐大又復雜的網絡系統。新涌現的多個研究報道發現ENS可以作為免疫系統的感應平臺,但對ENS與上皮細胞的互作機制還知之甚少。

             

            2019年12月,Jarret等人在Cell發表了題為Enteric Nervous System-Derived IL-18 Orchestrates Mucosal Barrier Immunity的文章。借助單分子mRNA熒光原位雜交(smFISH; THUNDER Imager 3D Live Cell),研究發現ENS神經元分泌IL-18作用于腸道上皮細胞中的杯狀細胞,促進杯狀細胞抗菌蛋白(AMP)的表達,在腸道免疫中起著重要作用。

             2 ENS與腸道上皮細胞互作機制

             

            研究過程

            鑒于大腦中神經元會分泌IL-18,而大量研究表明ENS可能在調節粘膜屏障免疫中發揮關鍵作用,因此研究人員大膽猜測腸道神經元也會分泌IL-18。接下來作者構建ENS特異性敲除IL-18小鼠和多種細胞類型特異性敲除IL-18R小鼠,并分別用鼠傷寒沙門氏菌(S.t)感染。之后作者通過共聚焦觀察發現不攜帶ENS所產生的IL-18的小鼠則更容易受到感染。為了證實這一發現,研究人員使用了IL18 mRNA探針在小鼠中進行了單分子mRNA熒光原位雜交(smFISH),結果顯示在IL-18-/-小鼠結腸中IL18 mRNA探針的信號丟失。

            3 THUNDER驗證結果與Confocal觀察結果一致

            A)用于分析IL-18+神經元的Confocal正交視圖。IL-18(紅色),Tubb3(綠色)。
            B)通過smFISH觀察野生型與IL18-/-小鼠結腸中的IL18 mRNA(白色)和DAPI(藍色)。

             

            同時通過smFISH檢測小鼠腸組織中IL18與Tubb3的表達,觀察到IL18 mRNA探針與神經元特異性Tubb3 mRNA探針共定位。

            4 smFISH檢測小鼠腸組織中IL18(紅色)、Tubb3(白色)表達;DAPI(藍色)表示細胞核

             

            總之,這些數據表明腸神經元是結腸中IL-18的新產生者。研究還結合了單細胞轉錄組技術來探究ENS來源IL-18的功能以及作用方式。

             

            實驗方法

            1. 處死小鼠,移出結腸并用冷PBS沖洗。縱向剖開結腸組織平鋪于濾紙。
            2. 用4%多聚甲醛PBS溶液固定3小時,后置于30%蔗糖、4%PFA的PBS溶液中4℃過夜。
            3. 包埋,制成將7mm厚切片,并用于smFISH染色。
            4. 設計的探針庫與Cy5(IL-18)、TMR(Tubb3)結合,將切片與smFISH探針庫雜交。
            5. 封片前去除ENS內的自發熒光信號。
            6. 在Leica THUNDER Imager 3D Live Cell上進行smFISH成像,使用自帶的THUNDER Computational Clearing設置。

             

            看到這里大家可能會有一個疑問:為什么不用共聚焦做smFISH而是選擇徠卡THUNDER?對,為什么?小編也提出過這個問題,但是下面這段話做出了很好地解釋。

             

            smFISH的實驗過程中探針會發出大量光子,而共聚焦則會顯著限制光子收集的數量,為了大限度回收這些光子,更建議使用寬場技術。

             

            徠卡THUNDER憑借其高分辨、快速、大視野的特點,可大限度回收實驗中smFISH探針發出的大量光子,減少光損耗,更適用于smFISH成像。不僅可以獲得清晰銳利的圖像,實驗結果更便于統計分析且重復性高,是您進行組織大視野快掃的*。

             

            參考文獻

            1. Jarret et al., 2020, Cell 180, 50–63
            2. Brain Res. 2018 August 15; 1693(Pt B): 128–133
            3. Jung, Y. J.,et al., 2017, Sci Rep 7(1):17360
            4. Zhang, H., et al. 2018, Synth Syst Biotechnol 3(2): 113-120

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