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            核酸提取、PCR、熒光定量PCR常見問題解答

            時間:2010-5-26閱讀:1922
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            *部分 核酸DNA和RNA提取常見問題分析

            1.       RNAfixer的工作原理?

            浸入組織,抑制RNase的活性。運輸方便,是非液氮類的一種樣品儲存液。

            2.       對于內源RNase豐富的組織和樣品,如何消除RNase?

            可以在提取時候多加裂解液,比如4:1等。

            3.       TRIpure and RNApure區別?

            胍鹽類的裂解液一樣,RNApure附加有離心柱,和漂洗液,是Kit。

            TRIpure只是裂解液。

            4.       凝血的gDNA和RNA的提取與新鮮血的提取不同?

            需加一個分離柱(separate column)分開凝血。

            5.       microRNA提取和定量?

            過2次離心柱,得到200bp一下的小RNA。可以測定OD定量。

            6.       血清,血漿,血液RNA提取的區別?以及Viral RNA提取的方法?

            液體類樣品RNA提取用TRIpure LS。一般血清、血漿是無細胞樣品,含游離的RNA,量比較少,建議加Carrier RNA在提取時候。

            病毒RNA提取加Carrier RNA在提取時候,BioTeke有專門的病毒RNA提取試劑盒。

            7.       通用植物RNA提取常見問題:蛋白質污染?

            DNA污染-DNaseI消化(Kit does not provide it, please get it from other companies.)

            8.       真菌RNA提取

            可用RNApure 或者通用植物RNA提取Kit。

            9.       DNA cleanup from gel and PCR, 區別?

            膠回收含有一個溶膠液。多功能膠回收可以用于膠回收和PCR產物回收。

            10.    土壤DNA提取優點?

            無需要機械破碎樣品和過柱的純化方式,減少DNA的鍛煉和得率,達到實驗目的。

             

            第二部分PCR/RT-PCR常見問題解答

            1.     二次PCR無目標產物,電泳孔道亮?

            Template稀釋和重新設計引物

            2.     microRNA的反轉錄問題?

            microRNA反轉錄和普通的mRNA的反轉錄不一樣。現在常見的microRNA反轉錄引物有2種,一個是step-loop結構;另外一種是3末端加polyA后,再用oligo(dT)逆轉錄。BioTeke有microRNA提取和2-step real-time PCR Kit。

            3.     cDNA的合成(RT)電泳,以及cDNA第二鏈的合成問題?

            2-5uLcDNA產物電泳有模糊條帶出現。第二鏈合成也有專門的試劑盒。BioTeke現在沒有此類產品。

            4.     Power Mix擴增不成功因素?

            產品或者引物或者目的基因的不表達。

            5.     RT-PCR沒有擴增產物?

            可能是引物,模版,產品等。

             

             

            第三部分Real-time qPCR 常見問題分析

            1.     做標準曲線時候,可否用2個不同體系濃度的稀釋分別對于內參和目的基因?

            建議用同樣稀釋倍數做曲線,因為模板濃度會影響擴增效率。

            2.     熔解曲線中,Tm不出現在80度左右?

            擴增片段100bp左右的,一般應該出現在80度左右。如果低于此溫度出現,可能是模板降解。

            3.     擴增曲線沒有Ct值,僅僅一條斜線?什么原因?

            模板濃度過低或者模板降解。

            4.     如果內參和目標基因表達量差別比較大,也就是目的基因的表達量少,

               Ctcon=15,Cttarget=38,可否應用?

            可以用于數據分析。因為表達量低,從而用過高模板進行擴增,從而同內標的模板不同,反而會增大數據統計的誤差。

            5.     引物濃度可否是50nM,是否太低?

            如果擴增曲線和熔解曲線比較好,這個濃度當然可以。如果更低,擴增結果好的情況下,同樣可以運用。

            一句話,所有的模板、引物等濃度盡量不要用高的,會影響擴增效率。

            6.     miRNA多個擴增時候,如果一個的擴增效果比較,其它熔解曲線不止一個峰,如何解決?

            Primer對于miRNA是專一的。所以重新設計引物是不可取的。那么只能是提高Tm或者更換mastermix等。反應體系會影響反應產物的。

            7.     相對定量方法,如果用Ct值比較,是各個樣品平均后在2delt Ct還是分別2 delt Ct在平均比較好?

            相對定量的方法各有優缺點,主要取決于實驗的目的和材料的準備。如果是材料群體個體差異不大,這2種方法基本沒有很大的區別;如果是個體差異比較大,建議用雙標準曲線做。就是分別做內參和目的基因的標準曲線,分別帶入Ct值計算。

            8.     熔解程序可否不加?

            如果是擴增效果好,特異擴增,可以不加熔解程序;但建議做好加上。

            9.     擴增反應體系5uL,擴增效率低,什么原因?

            反應體系小,各種因素的影響比較大,比如引物濃度、模板濃度及其金屬離子等會影響擴增效率的。

            10.  如何減少非特異性擴增的干擾?

            設計一對好引物,提高primer的退火溫度,以及設定吸光溫度。


             

             

             

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