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            DNA產物純化試劑盒簡介

            閱讀:4336      發布時間:2010-1-11
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            DNA產物純化試劑盒簡介:
            對于TA克隆、酶切或者直接測序等試驗來說,純化PCR產物或酶切
            產物是非常必要的。以TA克隆為例,其成功率跟目的片段的純度高
            低具有重要關系。雖然未經過純化的PCR產物也可以跟載體連接,
            但會增加篩選陽性克隆的難度,因為PCR產物中的dNTP和引物等
            可能也會跟載體連接。在進行連接試驗時,這些非特異性的產物會
            跟特異性產物相互競爭,從而導致連接效率下降。
            DNA片段純化回收原理
            在獲得DNA片段后,一般采用吸附材料的方法去除雜質和純化
            DNA片段。目前大多數生物公司都采用硅基質吸附材料,可特異
            性吸附核酸,有效去除體系中的蛋白、鹽類和有機物質。
            DNA片段純化回收的種類
            根據DNA片段在待回收體系中是否為單一條帶,可將DNA片段純
            化回收分為兩大類:直接純化和切膠純化。Solarbio公司針對這兩
            種純化方法開發出DNA產物純化回收試劑盒和瓊脂糖凝膠DNA純
            化回收試劑盒,可以滿足不同的試驗要求。
            直接純化
            適用于有單一DNA片段或溶液中所有DNA片段都需要回收。對于一些
            下游試驗如測序、SNP分析等,需要從PCR或酶切產物中去除鹽離子、
            dNTP、蛋白、引物等雜質,因為這些成分會抑制后續試驗的酶活性。
            切膠純化
            適用于選擇性回收溶液中多種DNA片段中的一種。對于后續試驗,采用
            切膠純化是有效的方法。通過瓊脂糖凝膠電泳可以分開特異性條帶和
            非特異性條帶,在紫外光下快速有效地切下目的片段所在位置的凝膠,
            然后通過進一步的純化就可以得到目的片段。對于要求較高的后續試
            驗,建議采用切膠純化的方法,這樣得到的片段純度比直接純化要高一些。
            DNA片段回收純化的一般流程:
            一、反應液收集
            PCR反應液
            1、如要進行后續TA克隆,請選用能在擴增產物末端加A尾的聚合
            酶,如Taq酶或Hotstart Taq酶。
            2、如對擴增序列保真度要求高,請選用具高保真擴增能力的聚合
            酶,如Pfu酶。
            3、由Pfu酶擴增得到的PCR產物不帶A尾,如要進行基因克隆,可
            選用加A反應液對其添加A尾,從而保證克隆效率。
            酶切反應液
            1、酶切時所加的DNA溶液體積不能太大,否則DNA溶液中其他成
            分會干擾酶切反應。
            2、雙酶切反應條件選擇可從兩種酶的反應溫度以及反應buffer
            來決定:從反應溫度考慮,應按照先高溫后低溫的順序進
            行;從反應buffer考慮,應按照先低鹽后高鹽的順序進行。
            二、電泳檢測
            PCR或酶切反應結束,一般通過凝膠電泳檢測擴增或酶切結果。凝
            膠電泳分為瓊脂糖凝膠和聚丙烯酰胺凝膠兩種,其中聚丙烯酰胺凝
            膠電泳普遍用于分離蛋白質及較小分子的核酸,瓊脂糖凝膠在分離
            同工酶及其亞型、大分子核酸等應用較廣。這兩種疑膠電泳是分
            離、鑒定和純化DNA片段的標準方法。
            瓊脂糖凝膠電泳
            瓊脂糖凝膠電泳是一種非常簡便、快速、常用的分離純化和鑒
            定核酸的方法。根據瓊脂糖的溶解溫度,把瓊脂糖分為一般瓊脂
            糖和低熔點瓊脂糖。低熔點瓊脂糖的熔點為62-65℃,溶解后在
            37℃下維持液體狀態約數小時,主要用于DNA片段的回收、質粒
            與外源性DNA的快速連接等。
            DNA在瓊脂糖凝膠中的遷移速率與瓊脂糖濃度、DNA分子量及構
            象、電泳緩沖液、電場強度等因素有關。一般來說,DNA片段越大或瓊
            脂糖濃度越大,其遷移速率越??;而電場強度越高,其遷移速率越大。
            分子生物學實驗中常用的電泳緩沖液主要有三種:TAE、TBE和
            TPE。TBE與TPE緩沖容量高,DNA分離效果好,但TPE會導致DNA
            片段回收時含磷酸鹽濃度高,容易使DNA沉淀。TAE緩沖容量低,
            但價格較便宜,TBE緩沖液含有的EDTA可螯合二價陽離子,可抑制
            DNase活性,防止PCR擴增產物降解。
            聚丙烯酰胺凝膠電泳
            聚丙烯酰胺凝膠是由丙烯酰胺單體在催化劑TEMED和過硫酸銨
            的作用下聚合形成長鏈,并在交聯劑N,N’-亞甲雙丙烯酰胺參與
            下,聚丙烯胺鏈與鏈之間交叉聯接而形成凝膠。
            聚丙烯酰胺凝膠電泳特別適宜分離鑒定低分子量蛋白質、小于1kb
            的DNA片段和DNA序列分析,長度僅相差0.2%(即500bp相差1bp)
            的核苷酸分子即能分離。
            聚丙烯酰胺分辨率較瓊脂糖凝膠分辨率高,按性質可分為變性與非
            變性兩種。前者主要用于單鏈DNA的分離及純化,后者則主要用于
            雙鏈DNA的分離及純化。
            核酸電泳指示劑
            核酸電泳常用的指示劑有溴酚蘭及二甲苯青兩種。溴酚蘭在堿性液
            體中呈紫蘭色,在0.6%、1%、1.4%和2%瓊脂糖凝膠電泳中,溴酚
            蘭的遷移率分別與1kb、0.6kb、0.2kb和0.15kb的雙鏈線性DNA片段
            大致相同。二甲苯青的水溶液呈蘭色,它在1%和1.4%瓊脂糖中電
            泳時,其遷移速率分別與2kb和1.6kb的雙鏈線性DNA大致相似。指
            示劑一般與蔗糖、甘油或聚蔗糖400組成載樣緩沖液。載樣緩沖液的
            作用有:①增加樣品密度,使其比重增加,以確保DNA均勻沉入加
            樣孔內。②在電泳中形成肉眼可見的指示帶,可預測核酸電泳的速
            度和位置。③使樣品呈色,使加樣操作更方便。
            核酸電泳染色劑
            核酸電泳后,需經染色才能顯現出帶型,常用的是溴化乙錠染色
            法,其次是銀染法。1、溴化乙錠染色法:EB是一種熒光染料,EB
            分子可嵌入核酸雙鏈的堿基對之間,在紫外線激發下,發出紅色熒
            光。2、銀染法:銀染色液中的銀離子(Ag+)可與核酸形成穩定的復合
            物。然后用還原劑如甲醛使Ag+還原成銀顆粒??砂押怂犭娪編境?br />黑褐色。主要用于聚丙烯酰胺凝膠電泳染色,也用于瓊脂糖凝膠染
            色。其靈敏度比EB高200倍,但銀染后,DNA不宜回收。
            三、DNA片段純化
            根據電泳結果,確定待回收的DNA片段在回收體系中是否為單一條
            帶后,可分別選擇不同的DNA片段純化試劑盒。如果目的DNA片
            段在回收體系中為特異的單一條帶,則可以選擇DNA產物純化回收
            試劑盒;如果在回收體系中的DNA片段外還有其它非特異性DNA片
            段,則需要選擇瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒。

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