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技術探討-細菌中提取分泌蛋白質的方法
閱讀：3148 發布時間：2013-7-22上海滬鼎生物根據售后處理客戶問題解答；結合技術部的實驗探討，特別針對細菌中提取分泌蛋白質有哪些方法做出解釋，本次實驗僅供參考依據，具體以實驗標準為準。
客戶需要從細菌中提取一種可分泌至培養基上清的一種小分子多肽，按照文獻的方法是取細菌上清后用氯仿抽提，可反復做過多次，蛋白總是沒有活性，不知道各位同仁有沒有什么好方法？請指教！
以下參考意見：
以下參考意見：
參考一：
氯仿是有機溶劑，所以但沒有活性。分離這種分泌性蛋白質，可以先將上清液透析，然后過柱。
參考二：
蛋白要保持活性，必須維持三維構象，而在有機溶劑處理的情況下，蛋白的三維構象被破壞，自然就沒有活性了。
如果你的培養液是高鹽濃度的，你可以在得到上清的可溶性蛋白后，加入5－10倍體積的復性液，以稀釋鹽濃度，防止在下一步透析過程中隨著鹽濃度的降低，造成蛋白析出沉淀而喪失活性，然后用透析袋進行透析，4度以防止蛋白降解，4-6小時，然后冷凍干燥，這樣得到的蛋白就能保持活性了。
參考三：
你的蛋白鏈內有二硫鍵么？結構一般不會太復雜吧？除非有復雜的二硫鍵，這么小的蛋白，復性應該不是主要矛盾。
一些小蛋白如果在有機溶劑中發生的疏水結構的改變是可逆的，而且疏水性較強，那可能就可以用氯仿抽提，很容易和大部分蛋白分開，不過脂類和脂蛋白肯定去不掉。
但是能溶于氯仿，你的蛋白我懷疑很有可能一般的水相條件并不是很好溶，先確定一下這個問題，然后結合你的測活方法，看看是不是在測活的時候蛋白失活的。
參考四：
我的蛋白確實是在一般的水相條件不好溶，活性的檢測方法沒什么問題，
氯仿抽提后用6M的尿素溶解，加ddH2O 倍比稀釋后檢測活性! 這是文獻上的方法，可總是沒有活性。 不知道是不是氯仿抽提的方法有問題？ 氯仿抽提法有沒有什么要注意的地方？
參考五：
培養上清中沒有尿素，可能蛋白濃度不高，但還是要確定一下蛋白能溶么？
或是直接純化前取上清測活看看，到底是不是氯仿的問題。
參考六：
我所提的蛋白是不溶于水的，但是在6M、8M的尿素中是可容的
取上清做證實上清是有活性的，所以我覺得是尿素沒有將我所需求的蛋白抽提出來，不知道是不是細節上出了些問題？各位，有沒有更好的辦法呢？
參考七：
是氯仿沒有把我所需的蛋白抽提出來
氯仿是有機溶劑，所以但沒有活性。分離這種分泌性蛋白質，可以先將上清液透析，然后過柱。
參考二：
蛋白要保持活性，必須維持三維構象，而在有機溶劑處理的情況下，蛋白的三維構象被破壞，自然就沒有活性了。
如果你的培養液是高鹽濃度的，你可以在得到上清的可溶性蛋白后，加入5－10倍體積的復性液，以稀釋鹽濃度，防止在下一步透析過程中隨著鹽濃度的降低，造成蛋白析出沉淀而喪失活性，然后用透析袋進行透析，4度以防止蛋白降解，4-6小時，然后冷凍干燥，這樣得到的蛋白就能保持活性了。
參考三：
你的蛋白鏈內有二硫鍵么？結構一般不會太復雜吧？除非有復雜的二硫鍵，這么小的蛋白，復性應該不是主要矛盾。
一些小蛋白如果在有機溶劑中發生的疏水結構的改變是可逆的，而且疏水性較強，那可能就可以用氯仿抽提，很容易和大部分蛋白分開，不過脂類和脂蛋白肯定去不掉。
但是能溶于氯仿，你的蛋白我懷疑很有可能一般的水相條件并不是很好溶，先確定一下這個問題，然后結合你的測活方法，看看是不是在測活的時候蛋白失活的。
參考四：
我的蛋白確實是在一般的水相條件不好溶，活性的檢測方法沒什么問題，
氯仿抽提后用6M的尿素溶解，加ddH2O 倍比稀釋后檢測活性! 這是文獻上的方法，可總是沒有活性。 不知道是不是氯仿抽提的方法有問題？ 氯仿抽提法有沒有什么要注意的地方？
參考五：
培養上清中沒有尿素，可能蛋白濃度不高，但還是要確定一下蛋白能溶么？
或是直接純化前取上清測活看看，到底是不是氯仿的問題。
參考六：
我所提的蛋白是不溶于水的，但是在6M、8M的尿素中是可容的
取上清做證實上清是有活性的，所以我覺得是尿素沒有將我所需求的蛋白抽提出來，不知道是不是細節上出了些問題？各位，有沒有更好的辦法呢？
參考七：
是氯仿沒有把我所需的蛋白抽提出來
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