細胞凍存操作步驟：

1、預先配制凍存液：

     凍存液比例多種，根據細胞的特性進行調整凍存液的比例：

     5%—10%DMSO  +  20%—90%血清  +  0%—70%基礎培養液；

2、取對數生長期的細胞，去除舊培養液，用PBS清洗1-2次；去掉培養瓶里的殘余血清；

3、加入適量胰酶（濃度一般為0.25%），使胰酶覆蓋整個瓶，放入培養箱消化；

4、細胞消化0.5-2min（具體時間根據鏡下形態判斷），顯微鏡下觀察細胞，細胞胞質回縮，細胞間不再連接成片，此時        加入*培養基終止消化；

5、用巴氏吸管輕輕吹打細胞，形成細胞懸液，將細胞懸液1000r/min左右條件下離心3-5min；

6、棄上清，加入適量預先配制好的凍存液，巴氏吸管輕輕吹打使細胞均勻，計數，調節凍存液中的細胞最終密度為                5×106/ml～1×107/ml；

7、將細胞分裝入凍存管中，每管1-1.5ml；

8、凍存管標記細胞名稱，凍存時間，操作者及細胞代數信息。

     對于懸浮細胞凍存，則直接收集離心細胞，除去胰酶消化的步驟，其他步驟相同。