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            埃博拉病毒(EBOV)熒光PCR試劑盒說明書

            閱讀:216        發布時間:2024-11-25
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              上海晅科生物科技有限公司

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            【產品名稱】

            通用名稱:埃博拉病毒 (EBOV)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法) 

            Name:Ebola Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)

            【包裝規格】25T/盒、50T/盒

            【預期用途】

            本試劑盒適用于檢測血液中的埃博拉病毒,用于埃博拉病毒感染的輔助診斷,其檢測結果僅供參考。

            【檢驗原理】

            本試劑盒采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術,設計一對埃博拉病毒 RNA 的特異性引物,結合一條特異性探針,用熒光 PCR 技術對埃博拉病毒的核酸進行體外擴增檢測,用于科研實驗中對可疑感染者的病原學檢測。

            【試劑組成】

            包裝規格25T/盒50T/盒

            EBOV 反應液500μL×1 管500μL×2 管

            酶液25μL×1 管50μL×1 管

            EBOV 陽性質控品250μL ×1 管250μL ×1 管

            陰性質控品250μL ×1 管250μL ×1 管

            說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

            【儲存條件及有效期】

            -20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,有效期 12 個月。

            【適用儀器】

            ABI7500 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

            【標本采集】

            疑似感染病人的靜脈血 2mL 至 EDTA-2Na 抗凝管。

            【保存和運輸】

            采集或處理好的樣品在 2℃~8℃條件下保存應不超過 24 h;若需長期保存,應放置-70℃以下保存,凍融不超過 3 次。

            【使用方法】

            1.樣品處理(樣本處理區)

            1.1樣本前處理

            2000rpm 離心 5min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中

            1.2核酸提取

            推薦采用上海晅科生物科技有限公司生產的核酸提取試劑(離心柱法)進行核酸提取,請按照試劑說明書    進行操作。

            2.試劑配制(試劑準備區)

            根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照;反應管數每滿 10 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:

            試劑EBOV 反應液酶液

            用量(樣本數為 N)19μL1μL

            將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,20μL/管。

            3.加樣(樣本處理區)

            將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品、陰性質控品各取 5μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻, 短暫離心。

            4.PCR 擴增(核酸擴增區)

            4.1將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內;

            4.2設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL;

            熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,請勿選擇 ROX 參比熒光。

            4.3推薦循環參數設置:


            步驟循環數溫度時間收集熒光信號

            11 cycle52℃10min

            21 cycle95℃2min


            3

            45 cycles95℃15sec

            60℃30sec

            5.結果分析判定

            5.1結果分析條件設定(請參照各儀器使用說明書進行設置,以分析 ABI7500 儀器為例)

            反應結束后自動保存結果,根據分析后圖像調節 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值(用戶可根據實際情況自行調整,Start 值可設在 3~15、End 值可設在 5~20,使閾值線位于擴增曲線指數期,陰性質控品的擴增曲線平直或低于閾值線),點擊 Analyze 自動獲得分析結果。

            5.2結果判斷

            陽性:檢測通道 Ct 值≤40,且曲線有明顯的指數增長曲線; 陰性:樣本檢測結果無 Ct 值,且無特異性擴增曲線;

            可疑:樣本檢測結果 40<Ct 值≤45,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 40<Ct 值≤45,且曲線有明顯的增長曲線,判定為陽性,否則為陰性。

            5.3質控標準

            陰性質控品:無特異性擴增曲線或無 Ct 值顯示;

            陽性質控品:擴增曲線有明顯指數增長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

            6.檢測方法的局限性

            1.樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;

            2.樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

            3.陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

            4.病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;

            5.不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

            6.試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;

            7.本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

            【注意事項】

            1.所有操作嚴格按照說明書進行;

            2.試劑盒內各種組分使用前應自然融化,完-全混勻并短暫離心;

            3.反應液應避光保存;

            4.反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

            5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服;

            6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;

            7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

            8.試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。

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