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人腦微血管內皮細胞的方法和全套流程
人腦微血管內皮細胞是血腦屏障的主要組成成分，能夠限制可溶性物質和細胞等從血液進入大腦。大腦微血管內皮細胞與外周內皮細胞相比具有一些相同特性。
注意：冷凍保存的細胞非常脆弱。將小瓶置于37°C水浴融化細胞，然后盡快移入培養物(液)中，盡量減少操作。
人腦微血管內皮細胞培養說明：
準備
1.準備纖維連接蛋白包被的培養瓶(2 μg /cm2，推薦用T-75的培養瓶)。向培養瓶中加入10 ml無菌Dulbecco's磷酸鹽緩沖液（DPBS），然后加入150 μl 纖維連接蛋白原液(1 mg/ml, Sigma cat. no. F1141)。將培養瓶放入培養箱中孵育過夜。
2.準備*培養基：用70%的酒精消毒培養基和添加物的外表面，然后放到無菌的地方。在無菌環境下打開每一個添加物管并用吸管將其加入到基本培養基中。以保證添加物全部加入基本培養基中。
3.吸出纖維連接蛋白溶液并向瓶內加入20 ml*培養基。將培養瓶放入超凈臺中，然后準備融化細胞。纖維連接蛋白溶液可以使用兩次。
4.將小瓶放入37°C水浴中，握住并輕輕旋轉小瓶直到其內細胞*融化。將小瓶立刻移出水浴，擦干，用70%的酒精沖洗小瓶，然后放到無菌環境中。小心地打開蓋子，注意手指不要碰到里面的螺紋。eppendorf吸管輕輕重懸管內容物。
5.將管內容物均勻的放入纖維連接蛋白包被的培養瓶中。推薦的接種密度為7,500 cells/cm2。
注意：不推薦在細胞融化后進行稀釋和離心，因為這些操作比培養基中的DMSO殘留物對細胞的傷害更大。需要注意的是，內皮細胞接種在纖維連接蛋白包被的培養瓶中能夠促進細胞的帖壁。
6.蓋好培養瓶的蓋子，輕輕地搖動培養瓶以使細胞分布均勻，如需氣體交換則適當放松瓶蓋。
7.將培養瓶放入培養箱中。
8.為了得到良好的結果，在培養開始后至少16個小時內不要動培養物。第二天更換培養基以去除殘留的DMSO和未貼壁的細胞，然后每隔一天進行如上操作。培養良好的細胞將呈現鵝卵石形或紡錘體形，細胞質無顆粒且細胞數量在培養2-3天后會倍增。
1.應用冰凍的細胞構建培養物后，可于次日早晨更換新鮮的含有添加物的培養基。隨后的傳代培養中，每隔48小時更換一次培養基。
2.此后每隔一天更換一次培養基，直到細胞約達到50%融合。
3.一旦細胞達到50%融合，則要每天更換培養基直到細胞大約達到90%融合。
傳代培養：
1.細胞達到90%融合時進行傳代培養。
2.傳代培養的前一天準備纖維連接蛋白包被的培養瓶(2 μg/cm2)。
3.將培養基，胰酶/EDTA消化液，胰酶中和液和DPBS(磷酸鹽緩沖液) 加熱至室溫。我們不推薦在使用前用37°C水浴加熱試劑和培養基。
4.用DPBS沖洗細胞。
5.用10 ml胰酶/EDTA消化液消化細胞(以T-75培養瓶為例)，直到80%細胞呈現圓形(在顯微鏡下觀察)。立刻加入10 ml 胰酶中和液并輕輕搖動培養瓶。
注意：應用ScienCell研究室的胰酶/EDTA消化液能使由于過度消化導致的細胞死亡降到最小程度。
6.收取細胞并將其移入50ml離心管中。另外用10ml生長培養基沖洗培養瓶以收集殘留的細胞。在顯微鏡下觀察剩余細胞數量以確定是否收集成功。剩余細胞數應小于5%。
7.以1000轉/分（1000rpm）離心收取的細胞懸液5分鐘，然后在生長培養基中重懸細胞。
8. 計數細胞，然后將它們以推薦的細胞密度接種在新的纖維連接蛋白包被過的培養瓶中。