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            首頁   >>   技術文章   >>   伊氏錐蟲(TE)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)

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            伊氏錐蟲(TE)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)

            閱讀:1412      發布時間:2022-4-21
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            【產品名稱】

            通用名稱:伊氏錐蟲(TE)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR )

            NameDiagnostic Kit for Trypanosoma evansi DNA(PCR-Fluorescence Probing

            【包裝規格】50T/

            【預期用途】 本試劑盒適用于檢測腦海馬回部組織、全血等樣本中的伊氏錐蟲,用于伊氏錐蟲感染的輔助診斷,其檢測 結果僅供參考。 

            【檢驗原理】 本試劑盒采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術,設計一對伊氏錐蟲特異性引物,結合一條特異性探針, 用熒光 PCR 技術對伊氏錐蟲DNA 進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

            【試劑組成】

            包裝規格50T/
            TE 反應液500μL×2
            酶液50μL×1
            TE 陽性質控品50μL ×1
            陰性質控品250μL ×1

            說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

            【儲存條件及有效期】 -20±5℃,避光保存、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,有效期 12 個月。

            【適用儀器】 ABI 、安捷倫 MX3000P/3005PLightCyclerBio-RadEppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

            【標本采集】 病死或撲殺動物的腦海馬回部組織 2g;待檢活動物,抽取全血 5mL EDTA-2Na 抗凝管

            【保存和運輸】 上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸, 嚴禁反復凍融。

            【使用方法】 1. 樣品處理(樣本處理區)

            1.1 樣本前處理 組織樣品:每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g,手術剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續研磨,待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 1.5mL 滅菌離心管中;咽拭子樣品直接取 100μL 1.5mL 滅菌離心管中。

            1.2 核酸提取 推薦采用優利科(上海)生命科學有限公司生產的核酸提取或純化試劑(磁珠法或離心柱法)進行核酸提 取,請按照試劑說明書進行操作。

            2. 試劑配制(試劑準備區) 根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣品每滿 10 份,多配制 1 ),每測試反應體系配制如下表:


            試劑TE 反應液酶液
            用量(樣本數為 N20μL1μL

            將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,21uL/管。

            3. 加樣(樣本處理區) 將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻, 短暫離心。

            4. PCR 擴增(核酸擴增區)


            4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內; 4.2 設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25μL; 熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter DyeFAM, 淬滅通道(Quencher DyeNONEABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。


            4.3 推薦循環參數設置:

            步驟循環數溫度時間收集熒光信號
            11 cycle9510min
            240 cycles9415sec


            5530sec


            5. 結果分析判定

            5.1 結果分析條件設定 設置 Baseline Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像 調節 Baseline start (一般可在 3~15 范圍內調節)stop (一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold Value (上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。

            5.2 結果判斷 陽性:檢測通道 Ct ≤35,且曲線有明顯的指數增長曲線; 可疑:檢測通道 35<Ct ≤38,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 35<Ct ≤38,且曲線有明顯的增長曲線, 判定為陽性,否則為陰性; 陰性:樣本檢測結果 Ct >38 或無 Ct 值。

            6. 質控標準 陰性質控品:Ct>38 或無 Ct 值顯示; 陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且 Ct ≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

            7. 檢測方法的局限性 1.樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關; 2.樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果; 3.陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果; 4.病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果; 5.不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果; 6.試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果; 7.本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

            【注意事項】 1.所有操作嚴格按照說明書進行; 2.試劑盒內各種組分使用前應自然融化,*混勻并短暫離心; 3.反應液應避光保存; 4.反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊; 5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服; 6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染; 7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器; 8.試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。


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