一、工作原理

RNA酶保護法（RNase Protection Assay，RPA，以下簡稱RPA），是近十年發(fā)展起來的一種全新的mRNA定量分析方法。

基本原理：將標記的特異RNA探針（32P或生物素）與待測的RNA樣品液相雜交，標記的特異RNA探針按堿基互補的原則與目的基因特異性結合，形成雙鏈RNA；未結合的單鏈RNA經RNA酶A或RNA酶T1消化形成寡核糖核酸，而待測目的基因與特異RNA探針結合后形成雙鏈RNA，免受RNA酶的消化，故該方法命名為RNA酶保護實驗。

二、RPA法優(yōu)點

與Northern blot和RT-PCR比較，RPA有以下幾個優(yōu)點：

1. 檢測靈敏度比Northern雜交高。

由于Northern雜交步驟中轉膜和洗膜都將造成樣品和探針的損失，使靈敏度下降，而RPA將所有雜交體系進行電泳，故損失小，提高了靈敏度。

2. 由于PCR擴增過程中效率不均一和反應“平臺"問題，基于PCR產物量進行分析所得數(shù)據的可靠性將下降，而RPA沒有擴增過程，因此，分析的數(shù)據真實性較高。

3.由于與反義RNA探針雜交的樣品RNA僅為該RNA分子的部分片段，因此，部分降解的RNA樣品仍可進行分析。

4.步驟較少，耗時短。與Northern雜交相比，省去了轉膜和洗膜的過程。

5.RNA-RNA雜交體穩(wěn)定性高，無探針自身復性問題，無須封閉。

6.一個雜交體系中可同時進行多個探針雜交，無競爭性問題。

7. 檢測分子長度可以任意設置，靈活性大。

三、RPA法缺點

?RNA酶保護試驗方法的主要缺點包括RNA探針的制備過程復雜、核酸酶消化時酶量的控制困難、需要使用放射性同位素。?

?RNA探針的制備過程復雜?：該方法的前提是必須首先將研究的基因克隆到一個載體中，并清楚插入片段的方向。載體插入片段兩側需要有T3、T7或SP6的啟動子位點。載體需要使用合適的內切酶線性化，并選擇正確的體外轉錄試劑盒，轉錄出要研究的mRNA的互補鏈，再進行純化。這一過程相對繁瑣且技術要求較高?。

?核酸酶消化時酶量的控制困難?：在核酸酶消化過程中，酶量的控制是一個挑戰(zhàn)，因為酶量難以精確控制，容易導致消化過頭，使得X片上沒有任何顯示。這表明實驗操作對酶量的控制要求非常高，否則會影響實驗結果的準確性?。

?需要使用放射性同位素?：該方法需要使用放射性同位素進行標記，雖然這種方法防護相對容易，但由于使用了放射性物質，需要進行特殊的處理和防護措施。此外，該方法還需要進行垂直板狀PAGE，并且涉及到大量的放射性物質，如電泳緩沖液、電泳槽、玻璃板、漂洗固定液及托盤等，這些都增加了實驗的復雜性和安全性考慮。如果非同位素的標記和檢測能夠達到相同的靈敏度和成本效益，這將是一個改進的方向?。

綜上所述，雖然RNA酶保護試驗方法在定量分析RNA方面具有高靈敏度和高特異性等優(yōu)點，但其操作復雜、對實驗條件要求高以及使用放射性同位素的限制是其主要的缺點。

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