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            賽默飛實時熒光定量PCR的工作流程

            2024-11-25  閱讀(390)

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            賽默飛實時熒光定量PCR儀的工作流程

            賽默飛實時熒光定量PCR儀(如ViiA™ 7、7500、QuantStudio系列)以其高精度和多功能性廣泛應用于分子生物學實驗。要實現高效、準確的實驗結果,遵循標準化的工作流程至關重要。以下是賽默飛實時熒光定量PCR儀的詳細工作流程,從樣品準備到數據分析的每個環節均作了詳盡說明。


            1. 實驗準備階段

            (1) 樣品準備

            1. 核酸提取

              • 從細胞、組織或其他樣品中提取目標DNA或RNA模板。

              • 如果是RNA樣本,需使用逆轉錄酶將RNA轉錄為cDNA。

              • 確保核酸的純度和濃度符合實驗要求(如無抑制劑殘留)。

            2. 樣品定量與質量檢測

              • 使用分光光度計或熒光計檢測核酸濃度和純度(260/280比值在1.8-2.0之間)。

              • 通過電泳確認樣品完整性。


            (2) 配制PCR反應體系

            1. 選擇試劑

              • 根據實驗需求選擇熒光染料法(如SYBR Green)或熒光探針法(如TaqMan探針)。

            2. PCR反應混合液配制
              按以下配比準備PCR反應液(總反應體積10-50 μL):

              • 模板DNA或cDNA(1-100 ng);

              • 引物(正向和反向,引物濃度一般為200-500 nM);

              • 熒光染料或探針(探針濃度一般為100-200 nM);

              • dNTPs、Taq DNA聚合酶和緩沖液;

              • 去離子水補足反應體積。

            3. 分裝反應液

              • 將PCR反應液分裝至96孔或384孔光學反應板中,每孔體積一致,避免氣泡產生。

              • 進行密封(使用光學透明薄膜或封板蓋)并短時間離心,使反應液集中到底部。


            (3) 儀器檢查

            1. 檢查儀器是否已正確連接到電源和電腦。

            2. 打開儀器軟件,確保光學模塊和溫控模塊運行正常。

            3. 檢查反應板對齊是否正確,避免樣品孔偏移影響熒光信號采集。


            2. 實驗運行階段

            (1) 加載反應板

            1. 打開儀器樣品艙門,將密封好的反應板或試管架放置在托盤上。

            2. 確保反應板正確對齊,避免孔位偏移影響光學檢測。

            (2) 設置實驗參數

            在賽默飛軟件(如QuantStudio或7500軟件)中進行實驗設置:

            1. 實驗類型選擇

              • 絕對定量:用于精確定量目標核酸。

              • 相對定量:用于基因表達變化分析。

              • 熔解曲線分析:檢測擴增產物的特異性或突變分析。

              • 根據實驗目標選擇適合的實驗類型,如:

            2. 樣品信息輸入

              • 定義樣品名稱、分組信息和孔位分布。

              • 設置目標基因和參考基因的信息。

            3. 熒光通道設置

              • 根據熒光探針或染料選擇檢測通道(如FAM、VIC、SYBR Green等)。

            4. 熱循環程序設置
              常規PCR循環參數如下:

              • 變性:95℃,15秒;

              • 退火/延伸:60℃,30秒;

              • 初始變性:95℃,2分鐘;

              • 循環階段(重復30-40次):

              • 熔解曲線分析(如適用):從60℃升溫至95℃,每0.5℃記錄熒光信號。

            (3) 啟動實驗

            1. 確認所有參數無誤后,點擊 “運行實驗"

            2. 儀器開始循環加熱并實時采集熒光信號,生成擴增曲線。


            3. 實驗完成與數據分析階段

            (1) 檢查實驗完成狀態

            • 儀器完成實驗后,軟件會提示實驗成功完成。

            • 取出反應板并安全存放,以備后續驗證或重復實驗。

            (2) 數據分析

            1. 查看擴增曲線

              • 檢查擴增曲線是否呈現典型的S形曲線,確認擴增反應的有效性。

              • 平穩的S形曲線表明擴增反應正常。

            2. Ct值計算

              • Ct值(Threshold Cycle)是熒光信號達到設定閾值的循環數。Ct值越小,說明模板起始量越高。

              • 軟件會自動計算每個樣品的Ct值。

            3. 標準曲線分析(用于絕對定量):

              • 根據標準品的Ct值繪制標準曲線,計算未知樣品的濃度。

            4. 相對定量分析

              • 比較目標基因與參考基因的表達水平,計算相對表達量(通常使用ΔΔCt法)。

            5. 熔解曲線分析(用于SYBR Green染料法):

              • 檢查擴增產物的特異性。單一峰值表明擴增特異性良好;多峰值可能提示非特異性擴增或引物二聚體形成。

            (3) 數據導出與保存

            • 將實驗數據保存為軟件支持的文件格式(如 .eds 或 .xls),便于后續分析和報告撰寫。


            4. 儀器清理與維護

            (1) 清理樣品托盤

            • 實驗完成后,用無塵布清潔樣品托盤,確保無殘留液體或雜質。

            (2) 光學模塊清潔

            • 每周用光學專用清潔液輕輕擦拭光學窗口,避免灰塵或指紋干擾熒光檢測。

            (3) 定期校準

            • 每3-6個月校準一次溫控模塊和光學檢測系統,確保儀器性能穩定。


            5. 注意事項

            1. 樣品制備

              • 確保核酸樣品無污染,提取過程使用無RNase、無DNase的耗材。

              • 模板濃度適中,避免過量或過稀導致非特異性擴增。

            2. 試劑配制

              • 使用新鮮的試劑,避免因試劑降解導致實驗失敗。

            3. 儀器環境

              • 將儀器放置在干燥、無振動的實驗環境中,保持室內溫度和濕度穩定。

            4. 操作規范

              • 密封反應板時,確保無氣泡干擾光學檢測。

              • 運行實驗時避免中途打開樣品艙門。


            總結

            賽默飛實時熒光定量PCR儀的工作流程涵蓋樣品準備、儀器設置、實驗運行和數據分析等多個環節。通過嚴格遵守標準操作流程和注意事項,用戶可以充分利用儀器的高靈敏度和高精度特點,獲得可靠的實驗數據。同時,定期維護和校準儀器可以確保長期穩定的性能,為實驗室研究提供強有力的技術支持。


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