一、試劑盒的組成與工作原理

試劑盒的組成

一步法 TUNEL 細胞凋亡檢測試劑盒（綠色熒光）主要包含以下幾種關鍵組分：

• TUNEL 反應混合液：包含脫氧核糖核苷酸末端轉移酶（TdT）和熒光標記的脫氧核糖核苷酸（如 FITC-dUTP）。TdT 能夠催化熒光標記的 dUTP 添加到 DNA 的 3'-OH 末端，從而實現對凋亡細胞 DNA 斷裂的標記。

• 洗滌緩沖液：用于去除未結合的標記物和其他雜質，確保檢測信號的特異性和準確性。

• 封片介質：用于封片，防止樣本干燥和熒光淬滅。

工作原理

在細胞凋亡過程中，DNA 會發生雙鏈或單鏈斷裂，產生大量的粘性 3'-OH 末端。TUNEL 技術正是基于此原理，通過 TdT 酶將標記的 dUTP 添加到 DNA 的斷裂末端。在一步法 TUNEL 檢測試劑盒中，反應混合液中的 TdT 和熒光標記的 dUTP 共同作用，將綠色熒光標記物（如 FITC）連接到 DNA 的 3'-OH 末端。正常細胞或增殖細胞由于 DNA 完整性較高，幾乎不產生 3'-OH 末端，因此熒光標記較少，而凋亡細胞則會因為 DNA 斷裂產生大量熒光信號。通過熒光顯微鏡觀察，可以清晰地區分出凋亡細胞和正常細胞。

二、操作使用方法

細胞或組織樣本準備

1. 細胞培養與固定：對于貼壁細胞，使用胰蛋白酶消化并收集細胞，懸浮細胞直接收集。將細胞以適量的密度接種在培養皿或蓋玻片上，進行凋亡誘導處理（如藥物處理、輻射等）。處理結束后，用 PBS 洗滌細胞兩次，去除培養基和其他成分。加入 4% 多聚甲醛固定細胞 15 - 30 分鐘。

2. 組織切片處理：對于組織樣本，將組織快速冷凍或固定后進行切片。冷凍切片厚度一般為 8 - 15 μm，石蠟切片厚度一般為 4 - 6 μm。脫蠟（石蠟切片）后，用 PBS 洗滌切片兩次。

細胞通透化處理

對于某些類型的細胞或組織，可能需要進行通透化處理以增強 TUNEL 反應的效果。使用 0.1% - 0.2% Triton X-100 處理細胞或組織切片 2 - 5 分鐘，以增加細胞膜的通透性，使 TdT 酶和反應底物能夠更好地進入細胞核。處理后用 PBS 洗滌兩次。

TUNEL 反應

1. 反應混合液配制：按照試劑盒說明書的要求，將 TUNEL 反應混合液各組分按比例混合。一般包括 TdT 酶、FITC-dUTP 和相關緩沖液。

2. 反應過程：將 TUNEL 反應混合液滴加在細胞或組織切片上，確保反應液覆蓋整個樣本。對于細胞樣本，一般每孔（96 孔板）加入 50 - 100 μL 反應液；對于組織切片，根據切片大小調整反應液體積。在 37℃、濕度較高的環境中孵育 1 - 2 小時。孵育時間應根據具體實驗需求和樣本類型進行優化。

染色與封片

反應結束后，用洗滌緩沖液洗滌細胞或組織切片 3 次，每次 5 分鐘，以去除未結合的反應混合液和其他雜質。對于需要復染的樣本，可使用 DAPI 或其他核染料進行細胞核染色，按照相應染料的說明書進行操作。最后，滴加適量的封片介質，蓋上蓋玻片，輕壓使其平整，避免產生氣泡。

熒光顯微鏡觀察與圖像分析

將封片后的樣本置于熒光顯微鏡下觀察。使用合適的激發和發射濾光片組合，FITC 的激發波長一般為 488 nm，發射波長為 510 - 530 nm；DAPI（如有復染）的激發波長為 350 - 360 nm，發射波長為 450 - 460 nm。在熒光顯微鏡下，凋亡細胞會顯示出綠色熒光（FITC 標記的 DNA 斷裂處），細胞核（如用 DAPI 染色）會顯示藍色熒光。通過觀察和拍照記錄熒光信號，可以對細胞凋亡情況進行定性和定量分析。

三、質量控制與注意事項

質量控制

一步法 TUNEL 細胞凋亡檢測試劑盒（綠色熒光）應保存在 4℃左右的低溫環境中，避免光照直射和溫度波動過大。在保存過程中，注意密封保存，防止試劑揮發或吸收水分。每一批次的試劑盒都經過嚴格的質量檢測，確保其性能符合要求。

注意事項

1. 實驗環境控制：實驗操作應在無菌環境下進行，避免樣本受到污染。使用的試劑、培養容器和操作工具都應經過嚴格的滅菌處理。操作應在超凈工作臺中進行，以降低污染風險。

2. 染色時間優化：TUNEL 反應時間應根據細胞類型和實驗需求進行優化。過短的反應時間可能導致標記不充分，影響檢測結果；過長的反應時間則可能導致非特異性標記，增加背景信號。建議在正式實驗前進行小規模的預實驗，以確定最佳的反應時間。

3. 避光操作：TUNEL 反應中的熒光標記物對光敏感，操作過程中應盡量減少樣本的光照時間，以防止熒光淬滅。在染色和封片過程中，應使用適當的避光措施，如使用避光罩或在暗室中操作。

4. 細胞狀態監測：實驗全程觀察細胞狀態，確保良好生理狀態，異常時及時調整條件。