細胞凋亡是維持內環境穩定，由基因控制的細胞自主有序死亡過程。在正常活細胞中，磷脂酰絲氨酸（PS）位于細胞膜內側，細胞凋亡早期，PS 會從細胞膜內側翻轉到外側，暴露在細胞外環境中。Annexin V 是一種分子量為 35-36kDa 的鈣離子依賴型磷脂結合蛋白，能與 PS 高親和力特異性結合。Annexin V-AbFluor™ 405 細胞凋亡檢測試劑盒中的 Annexin V 被 AbFluor™ 405 熒光染料標記，可通過流式細胞儀或熒光顯微鏡檢測早期凋亡細胞。

碘化丙啶（PI）是一種核酸染料，不能透過完整細胞膜。早期凋亡細胞的細胞膜保持完整，對 PI 有拒染性；但在凋亡中晚期的細胞和死細胞，PI 能透過細胞膜，使細胞核染上紅色熒光。將 Annexin V 與 PI 匹配使用，可區分活細胞、早期凋亡細胞以及凋亡中晚期或壞死細胞。

具體來說，使用 Annexin V-AbFluor™ 405 和 PI 染色細胞群后，在流式細胞儀或熒光顯微鏡下觀察：活細胞因細胞膜完整，Annexin V-AbFluor™ 405 無法與其結合，幾乎無熒光；早期凋亡細胞的 PS 外翻，Annexin V-AbFluor™ 405 與其結合，使細胞膜呈現藍色熒光；凋亡中晚期或壞死細胞，細胞膜破損，PI 進入細胞與核酸結合，使細胞核呈現紅色熒光，同時細胞膜上結合的 Annexin V-AbFluor™ 405 使其呈現藍色熒光。

操作步驟

• 流式細胞儀分析 ：

1. 通過所需方法誘導細胞凋亡，同時培養無誘導的對照培養物。

2. 4℃，300g 離心 5min 收集 1-2×10^5 細胞，用冰預冷的 PBS 洗滌兩次。貼壁細胞使用胰酶消化后離心收集細胞，需控制胰酶消化時間，避免細胞膜結構損傷出現細胞壞死假陽性。

3. 用 100µL 1×Annexin V Binding Buffer 重懸細胞。

4. 每 100µL 細胞懸液中加入 4-5µL Annexin V-AbFlour™ 405 和 1-2µL PI，輕柔混勻。

5. 室溫避光孵育 15min。

6. 孵育結束后加入 400µL 1×Annexin V Binding Buffer，輕柔混勻后置于冰上。染色后 30min 內通過流式細胞儀分析細胞，使用 404nm 和 535nm 激發，431nm 和 617nm 附近測量熒光。

• 熒光顯微鏡分析 ：

• 懸浮細胞 ：按流式細胞分析步驟操作后，將細胞懸浮置于玻片上，用蓋玻片蓋住細胞，盡快使用適當濾鏡通過熒光顯微鏡分析細胞。

• 貼壁細胞 ：

1. 細胞接種于爬片或腔室載玻片上，培養細胞。

2. 通過所需方法誘導細胞凋亡，同時培養無誘導的對照培養物。

3. 除去培養基，用 PBS 洗滌細胞兩次。

4. 準備工作液：每 100µL 1×Annexin V Binding Buffer 添加 4-5µL Annexin V-AbFlour™ 405 和 1-2µL PI，輕柔混勻。最佳濃度可根據具體實驗要求確定。

5. 在細胞中加入適量工作液，確保工作液全部覆蓋細胞，室溫避光孵育 15-30min，也可在冰上孵育，但孵育時間需延長到至少 30min。

6. 用 1×Annexin V Binding Buffer 洗滌細胞兩次，此步不要使用 PBS 洗滌細胞。

7. 載玻片上添加一滴 1×Annexin V Binding Buffer，然后將細胞爬片置于載玻片上，對于細胞腔室載玻片上的細胞，添加足夠 1×Annexin V Binding Buffer 覆蓋細胞，也可使用抗熒光淬滅封片劑封片。

8. 使用適當濾光片在熒光顯微鏡下分析細胞。

試劑盒組分及儲存

試劑盒包含 Annexin V Binding Buffer（5×）、Annexin V-AbFluor™ 405、Propidium Iodide（PI）。Annexin V Binding Buffer（5×）需按說明用去離子水稀釋成 1×Annexin V Binding Buffer。Annexin V-AbFluor™ 405 和 PI 均為即用型，使用前需平衡到室溫。試劑盒在 4℃避光保存，穩定期至少 6 個月。

技術參數

Annexin V-AbFluor™ 405 的激發波長 / 發射波長為 404nm/431nm，PI 與 DNA 結合后的激發波長 / 發射波長為 535nm/617nm。