細胞計數板的使用方法和注意事項

一、使用前準備

1. 器材與試劑

• 計數板：常見類型包括改良 Neubauer 計數板（規格：1×1×0.1 mm3，分 9 個大方格）、一次性塑料計數板（如 CHET4-SD100-002）。

• 工具：顯微鏡（配備 10× 物鏡）、微量移液器（10~100 μL）、蓋玻片（專用或 22×22 mm 標準玻片）、細胞懸液、臺盼藍染色液（如需區分死活細胞）。

2. 計數板預處理

• 清潔：用無水乙醇或 75% 酒精擦拭計數板表面，再用無塵紙擦干，避免油脂或雜質影響液體鋪展。

• 安裝蓋玻片：將蓋玻片平穩覆蓋在計數板的計數區上方，確保無氣泡且邊緣緊密貼合（通過毛細作用固定）。

二、操作步驟

1. 細胞懸液制備

• 混勻樣本：用吸管或移液器反復吹打細胞懸液 3~5 次，確保細胞均勻分散（避免沉淀導致取樣偏差）。

• 稀釋（如需）：若細胞濃度過高（如 >1×10? cells/mL），需用培養基或 PBS 按比例稀釋（如 1:10），使計數時每個中方格細胞數控制在 5~50 個（便于統計）。

2. 加樣

• 用微量移液器吸取 10~20 μL 細胞懸液，沿蓋玻片邊緣緩慢滴加（避免直接滴在計數區中央）。

• 液體通過毛細作用自動鋪展并覆蓋計數區，確保無氣泡、無液滴溢出邊緣（若有氣泡需重新清潔計數板并加樣）。

3. 靜置沉降

• 加樣后將計數板水平放置于顯微鏡載物臺上，靜置 1~2 分鐘，使細胞沉降到計數板底部（避免懸浮細胞導致計數誤差）。

4. 顯微鏡觀察與計數

• 低倍鏡定位：先用 10× 物鏡找到計數板的中央大方格（含 25 個中方格或 16 個中方格，根據計數板類型而定）。

• 高倍鏡計數：切換至 20× 或 40× 物鏡，按對角線原則選擇 4 個角的中方格 + 中央中方格（共 5 個中方格）進行計數。

• 壓線細胞處理：遵循 “計上不計下，計左不計右” 原則，避免重復計數。

• 死活細胞區分：若加入臺盼藍，活細胞透明，死細胞染成藍色，需分別計數并計算存活率（存活率 = 活細胞數 / 總細胞數 × 100%）。

5. 計算細胞濃度

• 公式推導：

• 若計數 5 個中方格的細胞總數為 $N$，稀釋倍數為 $D$，則：$\text{細胞濃度（cells/mL）}=\frac{N}{5}\times 25\times 10^4\times D=N\times 5\times 10^4\times D$
  （原理：5 個中方格體積為 $5\times 0.1{\text{mm}}^3=0.5\mu \text{L}=5\times 10^{?4}\text{mL}$，需換算為 1 mL 的濃度）。

三、注意事項

1. 操作規范性

• 避免細胞損傷：吹打懸液時力度適中，避免劇烈震蕩導致細胞破裂（尤其對貼壁細胞或脆弱細胞）。

• 加樣量精準：移液器需定期校準，加樣時保持垂直角度，避免液體殘留于槍頭或管壁。

• 溫度控制：細胞懸液和計數板需保持室溫（20~25℃），避免溫度差異導致細胞活性變化或液體揮發。

2. 計數準確性優化

• 重復計數：同一懸液制備 2~3 個計數板樣本，取平均值（若單次結果偏差 >10%，需重新實驗）。

• 適宜濃度范圍：理想計數濃度為 1×10?~1×10? cells/mL，濃度過低時建議離心富集（如 500×g 離心 5 分鐘，棄上清后重懸）。

3. 污染與損耗控制

• 一次性計數板：開封后立即使用，避免長時間暴露于空氣中導致灰塵污染。

• 玻璃計數板：使用后及時用清水沖洗（勿用硬物刮擦），晾干后存放于干燥盒中，避免霉菌滋生。

• 生物安全：處理感染性樣本（如病毒轉染細胞）時，需在生物安全柜中操作，計數板用后需高壓滅菌再丟棄。

4. 結果記錄與分析

• 記錄計數日期、樣本信息、稀釋倍數、各中方格細胞數及死活細胞比例，便于溯源和誤差分析。

• 若結果異常（如與歷史數據偏差 >20%），需排查懸液混勻度、加樣氣泡、計數板清潔度等因素，必要時更換新計數板。

四、常見問題與解決方案

五、適用場景與替代方案

• 常規細胞計數：適用于懸浮細胞（如 PBMC、酵母）和消化后的貼壁細胞（如 HEK293、HeLa）。

• 高精度需求場景：若需自動化計數或減少人為誤差，可選用熒光細胞計數板（配合熒光顯微鏡）或自動細胞計數儀（如 TC20、Countess III）。