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MFC(小鼠胃癌細胞)特點：
1. 細胞貼壁較弱
該細胞貼壁比較弱，因此在遇到運輸低溫及震蕩、室溫靜置太長時間、添加的培養基或其他試劑過冷、密度較高、聚集未吹散、加液吹打到細胞面等情況時會出現明顯的成片脫落現象，此時若脫落現象不嚴重應盡快放回培養基繼續培養，若呈大片脫落的情況時需要收集細胞重新消化吹散并接種。
2. 細胞生長較快
培養時應加入足量的培養基，避免培養基營養快速耗盡導致細胞脫落或狀態變差。注意關注培養基顏色變化和細胞密度，及時換液。注意控制細胞密度，過高或過低都可能影響細胞狀態，不要長時間高密度培養。
3. 消化時間控制
消化時間偏短，注意控制消化時間，控制消化時間見細胞傳代攻略。
MFC細胞收貨攻略
常溫細胞
1. T25瓶收貨后，拆開外包裝，用75%酒精消毒T25瓶表面，放37℃培養箱靜置2-4h。
2. 吸走大部分培養基并留10-12 ml，顯微鏡下拍照保存細胞狀態照片，觀察細胞密度，若細胞密度大于80%即可按比例傳代（首C傳代比例建議1：2），若細胞密度低于70%可以留10-12 ml繼續培養至細胞密度80%以上再進行傳代培養。
凍存細胞
1. 細胞收貨后盡快開箱檢查，若干冰充足可以取出細胞迅速置于-80℃冰箱（2-3天內復蘇）短期保存或液氮中長期保存，若干冰完Q揮發建議立即復蘇細胞并聯系銷售人員解決。
2. 凍存細胞建議盡快復蘇一管培養檢查，以免超出售后期，復蘇步驟參考復蘇攻略。
3. 復蘇一管細胞出現異常及時聯系銷售人員，在專業技術支持的指導下進行下一步操作。
MFC細胞傳代攻略
1. 先盡量吸干凈T25瓶原培養基，再加3-4ml 提前預熱的PBS輕輕潤洗細胞10-20s，吸走潤洗的PBS。
2. T25瓶加1ml左右胰酶，輕輕晃動培養瓶以使胰酶鋪勻瓶底細胞層，將培養瓶放入37℃培養箱消化。
3. 消化到細胞間隙變大，部分細胞完Q脫落時加2-3ml完Q培養基終止胰酶消化。
4. 混勻細胞，900rpm離心3-5min，棄上清。
5. 加新的完Q培養基輕輕重懸細胞，均勻分到新的培養瓶里，補足完Q培養基，最后將培養瓶放回培養箱靜置培養。
MFC細胞凍存攻略
凍存步驟
1. 先將細胞按傳代步驟消化、離心，至傳代步驟4，棄細胞上清，獲得細胞沉淀；
2. 加入適量預先配好的程序性凍存液輕輕重懸細胞，并將細胞懸液轉移至做好標記的凍存管中；
3. 將凍存管放入程序性凍存盒，放入-80℃冰箱過夜；
4. 轉移細胞至液氮保存并登記細胞保存位置，液氮保存24h后建議復蘇一管檢測凍存細胞的活性，若活性合格即可長期保存，若低于80%建議重新凍存；
MFC細胞復蘇攻略
復蘇步驟
1. 將所需的完Q培養基放在培養箱預熱30min后開始復蘇；
2. 準備37℃溫水，將細胞從液氮罐取中出，觀察管內無液氮的情況下，捏住管蓋，將細胞凍存部分浸入溫水輕輕搖晃，融化至米粒大小冰塊，終止水浴；
3. 將凍存管以離心力150g(約900rpm)左右離心1-2min，不同離心機具體轉速會有差異；
4. 離心完成后，棄凍存液，用剛才預熱的培養基緩慢加入凍存管，并輕柔重懸細胞后接種至T25或者10cm皿中。
常見問題及解決方案
細胞密度怎么計算的？
嚴格意義上，細胞密度需要收集細胞懸液計數細胞數量，但在實際培養過程中，并不需要為了精確控制細胞數量而消化細胞計數。因此，常用的細胞密度指細胞相對于最大生長密度的比值，貼壁細胞可以粗略的用細胞所占培養容器底面積百分比表示，即顯微鏡下觀察培養容器底部，有細胞的區域占總區域的百分比值，當然這種表達方式受限于單個細胞生長不同密度時所占面積不同導致并不嚴謹，但也是相當直觀、簡便的表現細胞狀態的一種方式；
NO.2培養過程中細胞碎片較多怎么處理？
1. 細胞內的黑色顆粒是細胞外分泌泡及細胞器折光，這個屬于細胞自身特性，無法清除也無法改變，大部分細胞都會有這種現象，只是不同細胞顆粒多少有區別，細胞培養體系不適應、營養缺乏、滲透壓異常等均可能導致細胞內顆粒增加，建議使用合適的培養條件。
2. 細胞外的黑色顆粒大部分是細胞碎片和細胞代謝產物，可以先吸走培養基后用PBS潤洗清除，再加新的培養基繼續培養。潤洗不能清除的可以換液清洗后等細胞密度70-80%左右消化處理細胞，消化完成后加完Q培養基終止消化，混勻細胞，收集細胞懸液900-1000rpm(約150g)離心3min，棄上清。再加5ml PBS重懸細胞，再離心后，用完Q培養基重懸接種到新的培養皿。第二次PBS重懸是為了去除碎片，如果平時碎片比較少，傳代時可以省略PBS重懸的步驟；如果碎片很多，建議PBS多洗幾次。
NO.3細胞具體消化時間是多久？
每個客戶用的胰酶活力及消化步驟、試劑都是不一樣的，不能完Q規定消化時間，以實際消化效果和客戶經驗為準。
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